A Clostridium difficile infekciók mikrobiológiai diagnosztikai lehetőségei

Cikk címe: A Clostridium difficile infekciók mikrobiológiai diagnosztikai lehetőségei

Szerzők: Dr. Urbán Edit

Intézmények: Szegedi Tudományegyetem

Évfolyam: XII. évfolyam

Lapszám: 2013. /

Oldal: 24-30

Terjedelem: 7

Rovat:

Alrovat:

Absztrakt:

A toxin-termelő Clostridium difficile törzsek felelősek leggyakrabban az antibiotikum használattal összefüggő hasmenésekért, jelentőségük mind a nem kórházi eredetű megbetegedések egyre emelkedő száma, mind a súlyosabb megbetegedéseket okozó, elsősorban járványos előfordulású új törzs, a 027 PCR-ribotípus miatt nő. Az infekciók kialakulásában több tényező játszhat szerepet: a normál bélflóra károsodása, toxintermelő törzs kolonizációja, idős kor, de előfordul, hogy semmilyen rizikófaktor nem szerepel az egyébként ép immunrendszerű, gyakran fiatal beteg anamnézisében. Az elmúlt két évben az egészségügyi ellátással összefüggő C. difficile fertőzés kiemelkedő problémává vált hazánkban: jelenleg a legnagyobb esetszámban bejelentett kórházi fertőzés, incidenciája 2011-ről 2012-re több mint kétszeresére nőtt. A diagnosztikai módszerek fejlődése, a gyors és megbízható laboratóriumi diagnosztika – alapvető fontosságú – a betegség etiológiájának kiderítése, a relapszusok számának – és a morbiditásnak a csökkentése, infekciókontroll tevékenység kivitelezésének segítése érdekében. A közlemény a jelenleg Magyarországon elérhető diagnosztikai módszereket, hazai és nemzetközi diagnosztikai algoritmusokat mutatja be.

Abstract:

Toxin-producing Clostridium difficile is responsible for the majority of antibiotic-associated diarrhoea. Its significance is getting more and more important due to the increasing number of community-acquired cases and the emergence of PCR ribotype 027, associated with more severe clinical picture. Several factors may play a role in the development of C. difficile infections, such as damaged bowel flora, colonization with toxinproducing strains, and advanced age of the patient, however in some cases, no risk factors could be identified in the past medical history of otherwise healthy patient. During the last two years, healthcare-associated C. difficile infections are significant problem in Hungary: this infection is associated with the highest reported case number in hospital settings, and its incidence is more than doubled from 2011 to 2012. Advances in the laboratory diagnosis, rapid and reliable laboratory methods are essential to explore the aetiology of a disease, to decrease the morbidity and the number of relapses, and to carry out infection control measures. This paper shows an overview of laboratory diagnostic methods available in Hungary, as well as local and international laboratory diagnostic algorithms.

XII. évfolyam

2013. / / Október


Cikk Szerző(k)
Beköszöntő Dr. Molnár Attila
Hála-Pénz – hálát a betegtől, pénzt az államtól! Nagy András László
Új lehetőség a betegjog-védelemben?! Az OBDK megalakulása és előzményei Benke Tibor
Az idegen nyelvű egészségügyi felsőoktatás jelentősége és fejlesztési lehetőségei Pécsett Szabó Gábor, Prof. Dr. Miseta Attila, Porvay Péter, Dr. Füzesi Zsuzsanna, Kresák Gergely
Rovatbeköszöntő – Egyedül nem megy! Dr. Rákay Erzsébet
Immunológiailag sérült betegek immunizációja Dr. Kulcsár Andrea
Újabb veszély a H7N9? Prof. Dr. Szalka András
A Clostridium difficile infekciók mikrobiológiai diagnosztikai lehetőségei Dr. Urbán Edit
Fizikai elvek alapján működő modern eszközök használata krónikus végtagi sebek kezelésében Herpai Vivien, Dr. Szokoly Miklós
A Magyar Járóbeteg Szakellátási Szövetség állásfoglalása Medicina 2000 Poliklinikai és Járóbeteg Szakellátási Szövetség
Milyen elvárásai vannak egy kórházhigiénikusnak a külső szolgáltatásként nyújtott takarítással szemben? Dr. Nagy Kamilla
Vajon mi védi jobban a gyermekeket: a tiltás vagy a kutatás? Dr. Ilku Lívia, Dr. Vizi János
A gyermekgyógyászati klinikai vizsgálatok és a gyermekgyógyászati vizsgálói hálózat hazai kialakítása Dr. Renczes Gábor
Az e-learning szerepe az orvosok és az egészségügyi szakdolgozók továbbképzésében Dr. Ködmön József, Baráti Csilla, Bodnár Károly
Életmód-változtatást támogató mobil informatikai alkalmazások Dr. Kósa István, Tamás Réka, Dr. Vassányi István, Prof. Dr. Kozmann György, Nemes Márta
Szerző Intézmény
Dr. Urbán Edit Szegedi Tudományegyetem

[1] Bartlett JG, Chang TW, Gurwith M, Gorbach SL, Onderdonk AB: Antibiotic-associated pseudomembranous colitis due to toxin-producing clostridia, N Engl J Med, 1978; 298:531-534.
[2] Voth DE, Ballard JD: Clostridium difficile toxins: mechanism of action and role in disease. Clin Microbiol Rev, 2005; 18(2):247-63.
[3] Kim H, Riley TV, Kim M et al: Increasing prevalence of toxin A-negative, toxin B-positive isolates of Clostridium difficile in Korea: impact on laboratory diagnosis, J Clin Microbiol, 2008; 46(3):1116 – 1117.
[4] Shin BM, Kuak EY, Yoo SJ, Shin W C, Yoo HM: Emerging toxin A−B+ variant strain of Clostridium difficle responsible for pseudomembranous colitis at a tertiary care hospital in Korea, Diagn Microbiol Infect Dis, 2008; 60:333–337.
[5] Amit Sundriyal, Roberts AK, Ling R, McGlashan J, Shone CC, Acharya KR: Expression, purification and cell cytotoxicity of actin-modifying binary toxin from Clostridium difficile, Protein Expr Purif, 2010;74(1):42-48.
[6] McDonald LC, Killgore GE, Thompson A, Owens RC Jr, Kazakova SV, Sambol SP, Johnson S, Gerding DN: Anepidemic, toxin gene-variant strain of Clostridium difficile, N Engl J Med, 2005;353(23):2433-2441.
[7] Bartlett JG, Gerding DN: Clinical recognition and diagnosis of Clostridium difficile infection, Clin Infect Dis, 2008;46(S1)2-8.
[8] Terhes G, Urbán E, Konkoly-Thege M, Székely E, Brazier JS, Kuijper EJ, Nagy E: First isolation of Clostridium difficile PCR ribotype 027 from a patient with severe persistent diarrhoea in Hungary, Clin Microbiol Infect, 2009;15(9):885-886.
[9] Chitnis AS, Holzbauer SM, Belflower RM, Winston LG, Bamberg WM, Lyons C, Farley MM, Dumyati GK, Wilson LE, Beldavs ZG, Dunn JR, Gould LH, MacCannell DR, Gerding DN, McDonald LC, Lessa FC: Epidemiology of community-associated Clostridium ifficile infection, 2009 through 2011, JAMA Intern Med, 2013;173(14):1359-1367.
[10] Lyerly DM, Krivan HC, Wilkins TD: Clostridium difficile: its disease and toxins, Clin Microbiol Rev, 1988;1(1):1-18.
[11] Cohen SH, Gerding DN, Johnson S, Kelly CP, Loo VG, McDonald LC, Pepin J, Wilcox MH, Society for Healthcare Epidemiology of America; Infectious Diseases Society of America: Clinical practice guidelines for Clostridium difficile infection in adults: 2010 update by the society for healthcare epidemiology of America (SHEA) and the infectious diseases society of America (IDSA), Infect Control Hosp Epidemiol, 2010;31(5):431-55.
[12]Planche T, Wilcox M: Reference assays for Clostridium difficile infection: one or two gold standards? J Clin Pathol, 2011;64(1):1-5.
[13] Hink T, Burnham CA, Dubberke ER: A systematic evaluation of methods to optimize culture-based recovery of Clostridium difficile from stool specimens, Anaerobe, 2013;19:39-43.
[14] Eckert C, Burghoffer B, Lalande V, Barbut F: Evaluation of the chromogenic agar chromID C. difficile, J Clin Microbiol, 2013;51(3):1002-1004.
[15] Chapin KC, Dickenson RA, Wu F, Andrea SB: Comparison of five assays for detection of Clostridium difficile toxin, J Mol Diagn, 2011;13(4):395-400.
[16] Musher DM, Manhas A, Jain P, Nuila F, Waqar A, Logan N, Marino B, Graviss EA: Detection of Clostridium difficile toxin: comparison of enzyme immunoassay results with results obtained by cytotoxicity assay, J Clin Microbiol, 2007;45(8):2737-2739.
[17] Eastwood K, Else P, Charlett A, Wilcox M: Comparison of nine commercially available Clostridium difficile toxin detection assays, a real-time PCR assay for C. difficile tcdB, and a glutamate dehydrogenase detection assay to cytotoxin testing and cytotoxigenic culture methods, J Clin Microbiol, 2009;47(10):3211-3217.
[18] Fenner L, Widmer AF, Goy G, Rudin S, Frei R: Rapid and reliable diagnostic algorithm for detection of Clostridium difficile, J Clin Microbiol, 2008;46(1):328-30.
[19] Tenover FC, Novak-Weekley S, Woods CW, Peterson LR, Davis T, Schreckenberger P, Fang FC, Dascal A, Gerding DN et al: Impact of strain type on detection of toxigenic Clostridium difficile: comparison of molecular diagnostic and enzyme immunoassay approaches, J Clin Microbiol, 2010;48(10):3719-3724.
[20] Carman RJ, Wickham KN, Chen L, Lawrence AM, Boone JH, Wilkins TD, Kerkering TM, Lyerly DM: Glutamate dehydrogenase is highly conserved among Clostridium difficile ribotypes, J Clin Microbiol, 2012;50(4):1425-1426.
[21] Novak-Weekley SM, Marlowe EM, Miller JM, Cumpio J, Nomura JH, Vance PH, Weissfeld A: Clostridium difficile testing in the clinical laboratory by use of multiple testing algorithms, J Clin Microbiol, 2010;48(3):889-893.
[22] Sharp SE, Ruden LO, Pohl JC, Hatcher PA, Jayne LM, Ivie WM: Evaluation of the C.Diff Quick Chek Complete Assay, a new glutamate dehydrogenase and A/B toxin combination lateral flow assay for use in rapid, simple diagnosis of Clostridium difficile disease, J Clin Microbiol, 2010;48(6):2082-2086.
[23] Carroll KC: Tests for the diagnosis of Clostridium difficile infection: the next generation, Anaerobe, 2011;17(4): 170-174.
[24] Culbreath K, Ager E, Nemeyer RJ, Kerr A, Gilligan PH: Evolution of testing algorithms at a university hospital for detection of Clostridium difficile infections, J Clin Microbiol, 2012; 50(9):3073-3076.
[25] Vasoo S, Stevens J, Portillo L, Barza R, Schejbal D, Wu MM, Chancey C, Singh KJ: Cost-effectiveness of a modified two-step algorithm using a combined glutamate dehydrogenase/toxin enzyme immunoassay and realtime PCR for the diagnosis of Clostridium difficile infection. Microbiol Immunol Infect, 2012 Aug 23. In press
[26] Wren B, Clayton C, Tabaqchali S: Rapid identification of toxigenic Clostridium difficile by polymerase chain reaction. Lancet, 1990;335(8686):423.
[27] Bélanger SD, Boissinot M, Clairoux N, Picard FJ, Bergeron MG: Rapid detection of Clostridium difficile in feces by real-time PCR. J Clin Microbiol 2003;41(2): 730-734.
[28] Stamper PD, Alcabasa R, Aird D, Babiker W, Wehrlin J, Ikpeama I, Carroll KC: Comparison of a commercial real-time PCR assay for tcdB detection to a cell culture cytotoxicity assay and toxigenic culture for direct detection of toxin-producing Clostridium difficile in clinical samples. J Clin Microbiol, 2009;47(2):373-378.
[29] Le Guern R, Herwegh S, Grandbastien B, Courcol R, Wallet F: Evaluation of a new molecular test, the BD Max Cdiff, for detection of toxigenic Clostridium difficile in fecal samples, J Clin Microbiol, 2012;50(9):3089-3090.
[30] Shin S, Kim M, Kim M, Lim H, Kim H, Lee K, Chong Y: Evaluation of the Xpert Clostridium difficile assay for the diagnosis of Clostridium difficile infection, Ann Lab Med, 2012;32(5):355-358.
[31] Ylisiurua P, Koskela M, Vainio O, Tuokko H: Comparison of antigen and two molecular methods for the detection of Clostridium difficile toxins, Scand J Infect Dis, 2013;45(1):19-25.
[32] Wilcox MH: Overcoming barriers to effective recognition and diagnosis of Clostridium difficile infection, Clin Microbiol Infect, 2012;18 Suppl 6:13-20.
[33] Crobach MJ, Dekkers OM, Wilcox MH, Kuijper EJ. European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases (ESCMID): data review and recommendations for diagnosing Clostridium difficile-infection (CDI), Clin Microbiol Infect, 2009 Dec; 15(12):1053-66.
[34] Az Országos Epidemiológiai Központ, az Orvosi Mikrobiológiai Szakmai Kollégium és az Infektológiai Szakmai Kollégium módszertani levele a Clostridium difficile fertőzések diagnosztikájáról, terápiájáról és megelőzéséről. Epinfo, 2011. 4. különszám