A multirezisztens szuper baktériumok és a fluorokinolon hatás

Cikk címe: A multirezisztens szuper baktériumok és a fluorokinolon hatás

Szerzők: Prof. Dr. Szabó Dóra, Dr. Füzi Miklós, Ludwig Endre, Dr. Csercsik Rita, Dr. Böszörményi-Nagy Géza, Dr. Liktor Bálint, Dr. Rákay Erzsébet

Intézmények: Semmelweis Egyetem Orvosi Mikrobiológiai Intézet, Egyesített Szent István és Szent László Kórház, Semmelweis Egyetem, Bajcsy-Zsilinszky Kórház Urológiai Osztály, Bajcsy-Zsilinszky Kórház, Szent János Kórház

Évfolyam: XVI. évfolyam

Lapszám: 2017. /

Oldal: 9-14

Terjedelem: 6

Rovat:

Alrovat:

Absztrakt:

A szerzők munkacsoportja korábban igazolta, hogy a fluorokinolon rezisztenciához kapcsolódó eltérő életképesség változás nagymértékben hozzájárult a methicillin rezisztens Staphylococcus aureus (MRSA) és multirezisztens Klebsiella pneumoniae nemzetközi klónjainak elterjedéséhez. Mivel a nagy nemzetközi klón törzsek multirezisztensek, disszeminációjuk nemcsak a fluorokinolonokkal, hanem egyéb antibiotikum csoportokkal (pl. β-laktámok, aminoglikozidok, makrolidek) szemben is a rezisztencia növekedéséhez vezetett. Vizsgálataik eredményét külföldi laboratóriumok megerősítették, és a későbbiek folyamán két további kórokozó (multirezisztens E. coli, Clostridium difficile) domináns klónjainál ugyancsak hasonló terjedési mechanizmust mutattak ki. Szerzők áttekintik a témában eddig megjelent hazai és külföldi közleményeket, és a szakirodalom alapján meg- állapítják, hogy a fluorokinolon típusú szerek ésszerűbb használatával jelentősen lehetne javítani az általános antibiotikum rezisztencia helyzeten.

Abstract:

Authors previously demonstrated that diverse fitness cost associated with resistance to fluoroquino lones has substantially contributed to the dissemination of the major international clones of methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) and multiresistant Klebsiella pneumoniae. Since the major clone isolates are multiresistant their spread resulted in elevations also in the rates of non-fluoroquinolone antibiotics (like β-lactams, aminoglycosides, macrolides). The findings had been confirmed by international laboratories which subsequently showed that a similar mechanism was res- ponsible for the dissemination of the major clones of two additional pathogens (multiresistant E. coli and Clost – ridium difficile). Authors review the related Hungarian and international literature and demonstrate that a more judicious use of tluoroquinolone type antibiotics should result in an improvement in the general antibiotic resis- tance situation.

XVI. évfolyam

2017. / / Október


Cikk Szerző(k)
Beköszöntő – A tisztaság fél egészség! Dr. Rákay Erzsébet
Tartalom IME Szerkesztőség
Az ápolás megújulásának lehetősége hazánkban Prof. Dr. Betlehem József, Dr. Oláh András
A multirezisztens szuper baktériumok és a fluorokinolon hatás Prof. Dr. Szabó Dóra, Dr. Füzi Miklós, Ludwig Endre, Dr. Csercsik Rita, Dr. Böszörményi-Nagy Géza, Dr. Liktor Bálint, Dr. Rákay Erzsébet
IME Semmelweis emlékév Publikációs Díj 2018. Pályázati felhívás IME Szerkesztőség
Az anion gap (rés) szerepe a szepszis diagnózisában Dr. Kovács Ákos
Jelentős magyar eredmények a kórházi fertőzések megelőzésében Emberi Erőforrások Minisztériuma Egészségügyért Felelős Államtitkárság
Influenzavírus nozokomiális patogén szerepben: az egészségügyi dolgozók oltottsága és a betegbiztonság kérdései Dr. Knausz Márta, Schlakkerné Keszthelyi Ildikó
Az Állami Egészségügyi Ellátó Központ Nyílt Pályázatot Hirdet az ápolás mesterképzési szakos hallgatók Michalicza-ösztöndíjára Emberi Erőforrások Minisztériuma Egészségügyért Felelős Államtitkárság
Germicid lámpa hatékony alkalmazása az egészségügyben Korondán László
Jelentős magyar eredmények a kórházi fertőzések megelőzésében Emberi Erőforrások Minisztériuma Egészségügyért Felelős Államtitkárság
M-ért ékes kezek a biztonságért Dr. Várkonyi István Zsolt, Tóth Andrea, Ócsai Gabriella Rózsa
IME XVII. Szolgáltatásmenedzsment Konferencia (2017. november 9.) IME Szerkesztőség
„Elkötelezetten dolgozunk minőségi céljaink megvalósításáért – Interjú Dr. Bodnár Attilával, a Bajcsy-Zsilinszky Kórház főigazgatójával Boromisza Piroska
Ispotályoktól a modern kórházakig II. Horváthné Csolák Erika
A Magyar Járóbeteg Szakellátási Szövetség állásfoglalása A Magyar Járóbeteg Szakellátási Szövetség Közgyűlése
Sokszínű betegségek, egyszínű gyógyítás? IME Szerkesztőség
Ha az első 30 napot túlélte, élje túl a következő 365-öt is! Értágítás után gyógyszer és utógondozás Fazekas Erzsébet
IME XVII. Vezetői Eszköztár – Kontrolling Konferencia (2017. december 7.) IME Szerkesztőség
Mérföldkövek az akut stroke ellátásában – Interjú Prof. Dr. Nagy Zoltánnal és Dr. Szikora Istvánnal Boromisza Piroska
Szerző Intézmény
Prof. Dr. Szabó Dóra Semmelweis Egyetem Orvosi Mikrobiológiai Intézet
Dr. Füzi Miklós Semmelweis Egyetem Orvosi Mikrobiológiai Intézet
Ludwig Endre Egyesített Szent István és Szent László Kórház
Dr. Csercsik Rita Semmelweis Egyetem
Dr. Böszörményi-Nagy Géza Bajcsy-Zsilinszky Kórház Urológiai Osztály
Dr. Liktor Bálint Bajcsy-Zsilinszky Kórház
Dr. Rákay Erzsébet Szent János Kórház

[1] CDC Deklaráció az Antibiotikum Rezisztencia Veszélyé – ről, 2013, www.cdc.gov/drugresistance/pdf/ar-threats- 2013-508.pdf
[2] Woodford N, Turton JF, Livermore DM: Multiresistant Gram-negative bacteria: the role of high-risk clones in the dissemination of antibiotic resistance, FEMS Microbiol Rev, 2011, 35: 736–755.
[3] Willems RJ, Hanage WP, Bessen DE, Feil EJ: Population biology of Gram-positive pathogens: high-risk clones for dissemination of antibiotic resistance, FEMS Microbiol, Rev. 2011; 35: 872–900.
[4] Füzi M: Dissimilar Fitness Associated with Resistance to Fluoroquinolones Influences Clonal Dynamics of Various Multiresistant Bacteria, Frontiers in Microbiology, 2016, 7: 1017-1025.
[5] Ungvári E, Berta B, Hajdu Á, Tákosné Fabók É, Vörös P, Szabó A T, Szikra L, Lakatos F, Kamotsay K, Markó E, Papp K, Székelyi K, Baranyai G, Kispál Gy, Urbán E, Kálmán Zs, Szabó J, Knausz M, Jung Á, Pászti J, Tóth Á: Véráram- fertőzést okozó, domináns Staphylococcus aureus klónok azonosítása Európában – a második nem- zetközi felmérés magyarországi eredményei, Mikrobioló – giai Körlevél, 2012, XII/1: 2-11.
[6] Projan ST: (Genome) size matters, Antimicrob Agents Chemother, 2007, 51:1133–1134.
[7] Elemam A, Rahimian J, Mandell W: Infection with panresis- tant Klebsiella pneumoniae: a report of 2 cases and a brief review of the literature, ClinInfect Dis, 2009, 49:271-4.
[8] Ying Q, Qun L, Qinzhong L, Mingliang C, Hong C, Zou: Investigation and control of a suspected nosocomial outb- reak of pan-drug resistant Acinetobacter baumannii in an intensive care unit, Open Med, 2016, 11: 587-592.
[9] Layeux B, Taccone FS, Fagnoul D, Vincent JL, Jacobs F: Amikacin monotherapy for sepsis caused by panresistant Pseudomonas aeruginosa, Antimicrob Agents Che – mother, 2010, 54: 4939–4941.
[10] Lenhard JR, Thamlikitkul V, Silveira FP, Garonzik SM, Tao X, Forrest A, Soo Shin B, Kaye KS, Bulitta JB, Nation RL, Li J, Tsuji BT: Polymyxin-resistant, carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii is eradicated by a triple combi- nation of agents that lack individual activity, J. Antimicrob. Chemother, 2017, Feb. 28. [Epuba head of print]
[11] Horváth A, Dobay O, Kardos S, Ghidán Á, Tóth Á, Pászti J, Ungvári E, Horváth P, Nagy K, Zissman S, Füzi M: Varying fitness cost associated with resistance to fluoro- quinolones governs clonal dynamic of methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Eur J Clin. Microbiol. Infect. Dis, 2012, 31: 2029-36.
[12] Damjanova I, Tóth Á, Pászti J, Hajbel-Vékony G, Jakab M, Berta J, Milch H, Füzi M: Expansion and countrywide dissemination of ST11, ST15 and ST147 ciprofloxacin- resistant CTX-M-15-type β-lactamase-producing Klebsiella pneumonia epidemic clones in Hungary in 2005 – the new ‘MRSAs’? J. Antimicrob. Chemother, 2008, 62:978-85.
[13] Tóth A, Kocsis B, Damjanova I, Kristóf K, Jánvári L, Pászti J, Csercsik R, Topf J, Szabó D, Hamar P, Nagy K, Füzi M: Fitness cost associated with resistance to fluoroquino- lones is diverse across clones of Klebsiella pneumoniae and may select for CTX-M-15 type extended-spectrumβ- lactamase, Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2014, 33:837- 43.
[14] Nicolas-Chanoine MH, Blanco J, Leflon-Guibout V, Demarty R, Alonso MP, Caniça MM, Park YJ, Lavigne JP, Pitout J, Johnson JR: Intercontinental emergence of Escherichia coli clone O25: H4-ST131 producing CTX- M-15, J Antimicrob Chemother, 2008, 61: 273–281.
[15] Tóth A, Juhász-Kaszanyitzky É, Mag T, Hajbel-Vékony G, Pászti J, Damjanova I: Characterization of extended- spectrumβ-lactamase (ESBL) producing Escherichia colis trains isolated from animal and human clinical samp- les in Hungary in 2006-2007, Acta Microbiol Immunol Hung, 2013, 60:175-85.
[16] Diancourt L, Passet V, Nemec A, Dijkshoorn L, Brisse S: The Population Structure of Acinetobacter baumannii: Expanding Multiresistant Clones from an Ancestral Susceptible Genetic Pool, PLoS One, 2010, 5:e10034.
[17] He M, Miyajima F, Roberts P, Ellison L, Pickard D, Martin M, Connor TR, Harris SR, Fairley D, Bamford KB, D’Arc S, Brazier J, Brown D, Coia JE, Douce G ,Gerding D, Kim HJ, Koh TH, Kato H, Senoh M, Louie T, Michell S, Butt E, Peacock SJ, Brown NM, Riley T, Songer G, Wilcox M, Pirmohamed M, Kuijper E, Hawkey P, Wren BW, Dougan G, Parkhill J, Lawley TD: Emergence and global spread of epidemic healthcare-associated Clostridium difficile, Nat Genet, 2013, 45: 109–113.
[18] Spigaglia P: Recent advances in the understanding of antibiotic resistance in Clostridium difficile infection, Ther Adv Infect Dis, 2016, 3: 23–42.
[19] Pászti J, Jánvári L, Tóth Á: Multirezisztens Acinetobacter baumannii klinikai izolátumok molekuláris epidemiológiai vizsgálata, Mikrobiológiai Körlevél, 2011, XI/1:3-12 .
[20] Tóth J, Urbán E, Osztie H, Benczik M, Indra A, Nagy E, Allerberger F: Distribution of PCR ribotypes among recent Clostridium difficile isolates collected in two districts of Hungary using capillary gelelectrophoresis and review of changes in the circulating ribotypes over time, J Med Microbiol, 2016, 65: 1158-1163.
[21] Willems RJ, Top J, van Santen M, Robinson DA, Coque TM, Baquero F, Grundmann H, Bonten MJ: Global spread of vancomycin-resistant Enterococcus faecium from dis- tinct nosocomial genetic complex, Emerg Infect Dis, 2005, 11: 821-8.
[22] Libisch B, Lepsanovic Z, Top J, Muzslay M, Konkoly- Thege M, Gacs M, Balogh B, Füzi M, Willems RJ: Molecular characterization of vancomycin-resistant En – tero coccus spp. clinical isolates from Hungary and Serbia, Scand J Infect Dis, 2008, 40:778-84.
[23] Berta B, Pászti J, Torma A, Vargáné Hunyadi Zs, Lesinszki V, Tóth Á: Vancomycin rezisztens Enterococcus spp. klinikai izolátumok vizsgálatainak eredményei az Országos Epidemiológiai Központban, Mikrobiológiai Körlevél, 2013, XIII/3-4: 2-10
[24] Knight GM, Budd EL, Whitney L, Thornley A, Al-Ghusein H, Planche T, Lindsay JA: Shift in dominant hospital-asso- ciated methicillin-resistant Staphylococcus aureus (HA- MRSA) clones over time, J Antimicrob Chemother, 2012, 67:2514-22.
[25] Holden MT, Hsu LY, Kurt K, Weinert LA, Mather AE, Harris SR, Strommenger B, Layer F, Witte W, de Lencastre H, Skov R, Westh H, Zemlicková H, Coombs G, Kearns AM, Hill RL, Edgeworth J, Gould I, Gant V, Cooke J, Edwards GF, McAdam PR, Templeton KE, McCann A, Zhou Z, Castillo-Ramírez S, Feil EJ, Hudson LO, Enright MC, Balloux F, Aanensen DM, Spratt BG, Fitzgerald JR, ParkhillJ, Achtman M, Bentley S D, Nübel U: Agenomic portrait of the emergence, evolution, and global spread of a methicillin-resistant Staphylococcus aureus pande- mic, Genome Res, 2013, 23: 653–664.
[26] Alam MT, Read TD, Petit RA III, Boyle-Vavra S, Miller LG, Eells SJ, Daum RS, David MZ: Transmission and micro- evolution of USA 300 MRSA in U.S. households: evi- dence from whole-genome sequencing, MBio, 2015, 6:e00054.
[27] Wasels F, Kuehne SA, Cartman S T, Spigaglia P, Barbanti F, Minton N P, Mastrantonio P: Fluoroquinolone resis- tance does not impose a cost on the fitness of Clostridium difficile in vitro, Antimicrob Agents Chemother, 2015, 59: 1794–1796.
[28] Johnson JR, Johnston B, Kuskowski MA, Sokurenko EV, Tchesnokova V: Intensity and mechanisms of fluoroqui- nolone resistance within the H30 and H30Rx subclones of Escherichia coli sequence type 131 compared with other fluoroquinolone-resistant E. coli, Antimicrob Agents Che mother, 2015, 59: 4471–4480.
[29] LeDell K, Muto CA, Jarvis WR, Farr BM: SHEA guideline for preventing nosocomial transmission of multidrug- resistant strains of Staphylococcus aureus and Entero – coccus, Infect Control Hosp Epidemiol, 2003, 24: 362– 386.
[30] Byrne FM,Wilcox MH: MRSA prevention strategies and current guidelines. Injury 2011; 42 (Suppl. 5): S3–S6.
[31] Wilcox MH, Shetty N, Fawley WN, Shemko M, Coen P, Birtles A, Cairns M, Curran M D, Dodgson KJ, Green SM, Hardy KJ, Hawkey PM, Magee JG, Sails AD, Wren MW: Changing epidemiology of Clostridium difficile infection following the introduction of a national ribotyping-based surveillance scheme in England, Clin Infect Dis, 2012, 55: 1056–1063.
[32] Dingle KE, Didelot X, Quan TP, Eyre DW, Stoesser N, Golubchik T, Harding RM, Wilson DJ, Griffiths D, Vaughan A, Finney JM, Wyllie DH, Oakley SJ, Fawley WN, Freeman J, Morris K, Martin J, Howard P, Gorbach S, Goldstein EJC, Citron DM, Hopkins S, Hope R, Johnson AP, Wilcox MH, Peto TEA, Walker AS, Crook DW; Modernising Medical Microbiology Informatics Group. Effects of control interventions on Clostridium difficile infection in England: an observational study, Lancet Infect Dis, 2017, 17:411-421.